التشخيص الجزيئي مع دراسة نمط حساسية المضادات الحيوية للبكتريا المرضية المعزولة من أخماج تسمم الدم في مستشفيات مدينة الرمادي

المؤلفون

  • مريم نوري صكر University of Anbar- Education College For Women - Department of biology
  • هناء عبد اللطيف ياسين جامعة الانبارـ كلية التربية للبنات https://orcid.org/0000-0001-6836-3711

DOI:

https://doi.org/10.54153/sjpas.2025.v7i1.897

الكلمات المفتاحية:

العزلات البكتيرية، تسمم الدم، التشخيص الجزيئي، المضادات الحيوية

الملخص

جمعت 150 عينة من أخماج تسمم الدم للمرضى في مستشفى النسائية والأطفال و مستشفى الرمادي التعليمي العام في مدينة الرمادي(محافظة الانبار) خلال الفترة من 31/7/2023 الى 1/11/2023، زرعت العينات على وسط  الدم الصلب و وسط الجكليت الصلب و وسط  الماكونكي الصلب و وسط  المانيتول الملحي الصلب، اظهرت النتائج ان 36 عينة دم من مجموع 150 عينة كانت إيجابية الزرع بينما 114 عينة كانت سلبية الزرع، اشارت نتائج تشخيص العزلات البكتيرية ان المسبب الأكثر للإصابة بتسمم الدم هي بكتريا المكورات العنقودية spp. Staphylococcus بنسبة 61% من مجموع العزلات البكتيرية، تليها بكتريا الكلبسيلا الرئوية klebsiella pneumoniae بنسبة 28%، ثم بكتريا الزوائف الزنجارية pseudomonas aeruginosa بنسبة 11% من مجموع العزلات البكتيرية وهي اقل نسبة في حدوث الإصابة بانتان الدم، اذ شخصت العزلات بواسطة الاختبارات البكتريولوجية والبايوكيميائية وجهاز الفايتك كما تم تأكيد تشخيصها جزيئيا بواسطة تقنية تفاعل البلمرة المتسلسل (PCR)، بالإضافة الى ذلك تم اختبار المقاومة  لعشرة أنواع من المضادات الحيوية للعزلات البكتيرية قيد الدراسة بطريقة الانتشار حول الاقراص، شملت المضادات كل من(Amikacin و Doxycilline و Augmentin و Linezolid و Imipenem و Levofloxacin و Trimemtheprim و Gentamicin و Rifampicin و Aztreonam)، أوضحت نتائج اختبار المقاومة للمضادات الحيوية اختلاف كبير في نسب المقاومة والحساسية للانواع البكتيرية.

السيرة الشخصية للمؤلف

  • هناء عبد اللطيف ياسين ، جامعة الانبارـ كلية التربية للبنات

    استاذ مساعد 

    ماجستير في احياء مجهرية

    قسم علوم الحياة

المراجع

1. Evans, L; Rhodes, A.; Alhazzani, W.; Antonelli, M.; Coopersmith, C. M.; French, C.; ... and Levy, M. (2021). Executive summary: surviving sepsis campaign: international guidelines for the management of sepsis and septic shock 2021. Critical care medicine, 49(11), 1974-1982.

2. Stoll, B. J. (2004). Section 2—-Infections of the Neonatal Infant: Pathogenesis and Epidemiology. Nelson Textbook of Pediatrics. 17th ed. Saunders, 623-640.

3. Bromiker, R.; Elron, E.; and Klinger, G. (2020). Do neonatal infections require a positive blood culture?. American journal of perinatology, 37(S 02), S18-S21.

4. Bullock, B.; and Sepsis, M. B. B. (2023). StatPearls Publishing LLC: Tampa. FL, USA.

5. Taylor, T. A.; and Unakal, C. G. (2022). Staphylococcus aureus .Updated 2022 Feb 14. Stat Pearls [Internet]. Stat Pearls Publishing, Treasure Island, FL. Available from .

6. Al-Omari, A.; Al Mutair, A.; Alhumaid, S.; Salih, S.; Alanazi, A.; Albarsan, H.; ... and Al Subaie, M. (2020). The impact of antimicrobial stewardship program implementation at four tertiary private hospitals: results of a five-years pre-post analysis. Antimicrobial Resistance and Infection Control, 9(1), 95.

7. Cassini, A.; Högberg, L. D.; Plachouras, D.; Quattrocchi, A.; Hoxha, A.; Simonsen, G. S.; ... and Hopkins, S. (2019). Attributable deaths and disability-adjusted life-years caused by infections with antibiotic-resistant bacteria in the EU and the European Economic Area in 2015: a population-level modelling analysis. The Lancet infectious diseases, 19(1), 56-66.

8. Klinker, K. P.; Hidayat, L. K.; DeRyke, C. A.; DePestel, D. D.; Motyl, M.; and Bauer, K. A. (2021). Antimicrobial stewardship and antibiograms: importance of moving beyond traditional antibiograms. Therapeutic Advances in Infectious Disease, 8, 20499361211011373.

9. Johan, P.; Harley, I.; and Prescott, M. (2003). Laboratory Exercise in Microbiology. McGraw-Hill. USA, 484, 149-1538.

10. Abbas, R. M. (2021). Association of interleukin-6 and interleukin-11 with neonatal sepsis in Diyala Province (Doctoral dissertation, Diyala University).‎

11. Li, J.; Xia, S.; Liu, Y.; Zhang, S.; and Jin, Z. (2022). Bacteriological profile and antibiotic susceptibility pattern of neonatal septicemia and associated factors of ICU Hospitalization Days. Infection and drug resistance, 427-438.

12. Mariani, M.; Parodi, A.; Minghetti, D.; Ramenghi, L. A.; Palmero, C.; Ugolotti, E.; ... and Castagnola, E. (2022). Early and late onset neonatal sepsis: epidemiology and effectiveness of empirical antibacterial therapy in a III level neonatal intensive care unit. Antibiotics, 11(2), 284.

13. Abdul-Rahman, S. M.; and Khider, A. K. (2020). Neonatal sepsis: Bacteriological profile, molecular detection and antimicrobial susceptibility test among pre-term pediatrics in Erbil city, Iraq. Zanco Journal of Medical Sciences (Zanco J Med Sci), 24(2), 256-273.

14. Tsegaye, E. A.; Teklu, D. S.; Bonger, Z. T.; Negeri, A. A.; Bedada, T. L.; and Bitew, A. (2021). Bacterial and fungal profile, drug resistance pattern and associated factors of isolates recovered from blood samples of patients referred to Ethiopian Public Health Institute: cross-sectional study. BMC Infectious Diseases, 21, 1-10.

15. Wen, S. C.; Ezure, Y.; Rolley, L.; Spurling, G.; Lau, C. L.; Riaz, S.; ... and Irwin, A. D. (2021). Gram-negative neonatal sepsis in low-and lower-middle-income countries and WHO empirical antibiotic recommendations: A systematic review and meta-analysis. PLoS medicine, 18(9), e1003787.

16. Wang, J.; Zhang, H.; Yan, J.; and Zhang, T. (2022). Literature review on the distribution characteristics and antimicrobial resistance of bacterial pathogens in neonatal sepsis. The Journal of Maternal-Fetal and Neonatal Medicine, 35(5), 861-870.

17. Maleki, D.; Jahromy, S. H.; Karizi, S. Z.; and Eslami, P. (2016). The prevalence of acrA and acrB genes among multiple-drug resistant uropathogenic Escherichia coli isolated from patients with UTI in Milad Hospital, Tehran. Avicenna Journal of Clinical Microbiology and Infection, 4(1), 39785-39785.

18. Al-Dahmoshi, H. O. M. (2013). Genotypic and phenotypic investigation of alginate biofilm formation among Pseudomonas aeruginosa isolated from burn victims in Babylon, Iraq. Science Journal of Microbiology, 2013.

19. Hu, Y.; Liu, A.; Vaudrey, J.; Vaiciunaite, B.; Moigboi, C.; McTavish, S. M.; ... and Coates, A. (2015). Combinations of β-lactam or aminoglycoside antibiotics with plectasin are synergistic against methicillin-sensitive and methicillin-resistant Staphylococcus aureus. PLoS One, 10(2), e0117664.

20. Guo, Y.; Song, G.; Sun, M.; Wang, J.; and Wang, Y. (2020). Prevalence and therapies of antibiotic-resistance in Staphylococcus aureus. Frontiers in cellular and infection microbiology, 10, 107.

21. Saeed, C. H.; AL-Otraqchi, K. I.; and Mansoor, I. Y. (2015). Prevalence of urinary tract infections and antibiotics susceptibility pattern among infants and young children in Erbil city. Zanco Journal of Medical Sciences (Zanco J Med Sci), 19(1), 915_922-915_922.

22. Sarathbabu, R. M. B. B. S.; Rajkumari, N.; and Ramani, T. V. (2013). Characterization of Coagulase negative Staphylococci isolated from urine, pus, sputum and blood samples. Int J Pharm Sci Inven, 2, 37-46.

23. Abdelraheem, W. M.; Abdelkader, A. E.; Mohamed, E. S.; and Mohammed, M. S. (2020). Detection of biofilm formation and assessment of biofilm genes expression in different Pseudomonas aeruginosa clinical isolates. Meta Gene, 23, 100646.

24. Panda, S. S.; Singh, K.; Pati, S.; Singh, R.; Kant, R.; and Dwivedi, G. R. (2022). Pseudomonas aeruginosa: pathogenic adapter bacteria. Antimicrobial Resistance: Underlying Mechanisms and Therapeutic Approaches, 113-135.

25. Flake, P.; Moorby, P.; Golson, S.; Salz, A.; and Davidmann, S. (2020). Verilog HDL and its ancestors and descendants. Proceedings of the ACM on Programming Languages, 4(HOPL), 1-90.

التنزيلات

منشور

2025-03-30

كيفية الاقتباس

التشخيص الجزيئي مع دراسة نمط حساسية المضادات الحيوية للبكتريا المرضية المعزولة من أخماج تسمم الدم في مستشفيات مدينة الرمادي. (2025). مجلة سامراء للعلوم الصرفة والتطبيقية, 7(1), 145-156. https://doi.org/10.54153/sjpas.2025.v7i1.897

المؤلفات المشابهة

1-10 من 165

يمكنك أيضاً إبدأ بحثاً متقدماً عن المشابهات لهذا المؤلَّف.