في الراكدة البومانية phoHتأثير تجويع الفوسفات على

المؤلفون

  • Nawal Barzan Yazea almustansiriyah
  • halah Haitham Mohammed
  • Eman Sadiq Abd ali

DOI:

https://doi.org/10.54153/sjpas.2025.v7i1.940

الكلمات المفتاحية:

Acinetobacter baumannii , inorganic phosphate, PhoH protein, q- PCR,

الملخص

Acinetobacter baumannii هي بكتيريا سالبة الغرام وهي مقاومة للظروف البيئية مثل نقص العناصر الغذائية. يعتبر الفوسفات غير العضوي أحد العناصر الغذائية الأساسية في ايض الخلايا البكتيرية. تأثير تجويع الفوسفات على نمو A.baumannii في الوسط M9 على التعبير الجيني للـ phoH (psiE), زاد مستوى تعبير phoH بحوالي 10 أضعاف في وجود K2HPO4 وحوالي 5- أضعاف مع KH2PO4 في A. baumannii ATCC17904.، في A. baumannii HHR1، يتم تحفيز التعبير الجيني لـ phoH بشكل ملحوظ باستخدام Na2HPO4، حيث يكون مستوى التعبير أعلى بحوالي 25 مرة من مستوىATCC. ،بينما كان  3 -أضعاف مع KH2PO4 مقارنة بالسلالة العالميةATCC. أظهر نمو عزلات A. baumannii في الوسط M9 سمات مختلفة في وجود مصادر الفوسفات غير العضوية، في حين أن أعلى نمو في السلالة العالميةATCC17904 مع Na2HPO4/NaH2PO4 معًا. في حين أظهرت العزلة المحليةHHR1 أعلى نمو في وجود NaH2PO4، في حين أظهرت العزلات السريرية الثمانية تباين النمو استجابة لمصادر مختلفة. أظهرت A. baumannii المعزولة سريريًا L1 وL4 معدل نمو أعلى مع Na2HPO4، في حين أن L3 لديه أعلى نمو في K2HPO4/KH2PO4. بينما العزلات L2 وL5 وL6 وL7 وL8 كان معدل نمو مرتفع مع مزيج Na2HPO4/ NaH2PO4، حيث كان بروتين PhoH حوالي 41 كيلو دالتون، وظهر عند استخدام K2HPO4 وKH2PO4 وNa2HPO4،كان بروتين PhoH غائبًا في وجود NaH2PO4 وNa2HPO4/NaH2PO4 في السلالة المحلية HHR1

المراجع

Ambreetha, S., & Singh, V. (2023). Genetic and environmental determinants of surface adaptations in Pseudomonas aeruginosa. Microbiology, 169(6), 1335.

2.Antelmann, H., Scharf, C., & Hecker, M. (2000). Phosphate starvation-inducible proteins of Bacillus subtilis: proteomics and transcriptional analysis. Journal of Bacteriology, 182(16), 4478–4490.

3.Boll, J. M., Tucker, A. T., Klein, D. R., Beltran, A. M., Brodbelt, J. S., Davies, B. W., & Trent, M. S. (2015). Reinforcing lipid A acylation on the cell surface of Acinetobacter baumannii promotes cationic antimicrobial peptide resistance and desiccation survival. MBio, 6(3), e00478-15.

4.Chen, Z., Liu, W., Zhang, Y., Li, Y., Jian, Z., Deng, H., Zou, M., & Liu, Y. (2013). Molecular epidemiology of carbapenem‐resistant Acinetobacter spp. from XiangYa Hospital, in Hunan Province, China. Journal of Basic Microbiology, 53(2), 121–127.

5.Falcone, M., Tiseo, G., Nicastro, M., Leonildi, A., Vecchione, A., Casella, C., Forfori, F., Malacarne, P., Guarracino, F., & Barnini, S. (2021). Cefiderocol as rescue therapy for Acinetobacter baumannii and other carbapenem-resistant Gram-negative infections in intensive care unit patients. Clinical Infectious Diseases, 72(11), 2021–2024.

6.Hamzah, A. S. (2018). Genetic Variations in rplB Gene Associated with Multidrug Resistance Acinetobacter baumannii Isolated from Different Clinical Sources. Al-Nahrain Journal of Science, 21(3), 119–125.

7.Jong, H. De, Casagranda, S., Giordano, N., Cinquemani, E., Ropers, D., Geiselmann, J., & Gouze, J. (2017). Mathematical modelling of microbes : metabolism , gene expression and growth.

8.Joy, A. P., Ayre, D. C., Chute, I. C., Beauregard, A.-P., Wajnberg, G., Ghosh, A., Lewis, S. M., Ouellette, R. J., & Barnett, D. A. (2018). Proteome profiling of extracellular vesicles captured with the affinity peptide Vn96: comparison of Laemmli and TRIzol© protein-extraction methods. Journal of Extracellular Vesicles, 7(1), 1438727.

9.Jyothisri, K., Deepak, V., & Rajeswari, M. R. (1999). Purification and characterization of a major 40 kDa outer membrane protein of Acinetobacter baumannii. FEBS Letters, 443(1), 57–60.

10.Khan, Y., Ekka, M. K., & Meena, L. S. (2024). Structural and functional characterization of mycobacterial PhoH2 and identification of potential inhibitor of its enzymatic activity. Brazilian Journal of Microbiology, 1–19.

11.Martín, J. F., & Liras, P. (2020). The Balance Metabolism Safety Net : Integration of Stress Signals by Interacting Transcriptional Factors in Streptomyces and Related Actinobacteria. 10(January), 1–19. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.03120

12.Ng, W. (n.d.). Growth of Pseudomonas protegens Pf-5 in M9 minimal salts medium. 1–6.

Qi, W., Baldwin, S. A., Muench, S. P., & Baker, A. (2016). Pi sensing and signalling: from prokaryotic to eukaryotic cells. Biochemical Society Transactions, 44(3), 766–773.

13.Rakovitsky, N., Lellouche, J., Ben David, D., Frenk, S., Elmalih, P., Weber, G., Kon, H., Schwartz, D., Wolfhart, L., & Temkin, E. (2021). Increased capsule thickness and hyper-motility are traits of carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii ST3 strains causing fulminant infection. Open Forum Infectious Diseases.

14.Santos-Beneit, F. (2015). ThePho regulon: a huge regulatory network in bacteria. Frontiers in Microbiology, 6, 402.

15.Schäck, L. M., Noack, S., Winkler, R., Wißmann, G., Behrens, P., Wellmann, M., Jagodzinski, M., Krettek, C., & Hoffmann, A. (2013). The phosphate source influences gene expression and quality of mineralization during in vitro osteogenic differentiation of human mesenchymal stem cells. PLoS One, 8(6), e65943.

16.Trung, N. T., Hung, N. M., Thuan, N. H., Canh, N. X., Schweder, T., & Jürgen, B. (2019). An auto-inducible phosphate-controlled expression system of Bacillus licheniformis. BMC Biotechnology, 19(1), 1–8.

التنزيلات

منشور

2025-03-30

كيفية الاقتباس

في الراكدة البومانية phoHتأثير تجويع الفوسفات على . (2025). مجلة سامراء للعلوم الصرفة والتطبيقية, 7(1), 192-206. https://doi.org/10.54153/sjpas.2025.v7i1.940

المؤلفات المشابهة

1-10 من 51

يمكنك أيضاً إبدأ بحثاً متقدماً عن المشابهات لهذا المؤلَّف.